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RAA等溫擴(kuò)增的規(guī)范操作流程分享

發(fā)布時間: 2025-09-11  點(diǎn)擊次數(shù): 46次
   RAA等溫擴(kuò)增技術(shù)作為分子檢測領(lǐng)域的新產(chǎn)物,突破了傳統(tǒng)PCR對熱循環(huán)儀的依賴,可在37-42℃恒溫條件下實現(xiàn)靶標(biāo)DNA/RNA的快速擴(kuò)增,廣泛應(yīng)用于現(xiàn)場快檢、基層醫(yī)療與應(yīng)急防疫。RAA等溫擴(kuò)增的高靈敏度與便捷性,要求使用者掌握嚴(yán)謹(jǐn)、規(guī)范的操作流程,以避免污染、假陰性或結(jié)果漂移。

 


  第一步:環(huán)境準(zhǔn)備與試劑預(yù)平衡
  在獨(dú)立的核酸操作區(qū)進(jìn)行,遵循“三區(qū)分離”原則(試劑準(zhǔn)備、樣本處理、擴(kuò)增檢測)。從-20℃冰箱取出RAA試劑盒,置于冰上緩慢解凍。使用前將所有組分(引物探針、緩沖液、酶混合液)短暫離心,確保管壁無殘留。工作臺面用75%乙醇或DNAAway清潔,開啟生物安全柜并紫外照射15分鐘。
  第二步:反應(yīng)體系配制
  按說明書比例在無菌PCR管中加入:
  RAA緩沖液(含dNTPs、Mg??);
  上下游引物與熒光探針(FAM/TAMRA標(biāo)記);
  RAA酶混合液(含重組酶、單鏈結(jié)合蛋白、DNA聚合酶);
  無核酸酶水補(bǔ)足體積。
  每批次設(shè)陽性對照與陰性對照(用水代替模板),防止假陰性或污染誤判。
  第三步:模板加入與混勻
  將提取好的DNA/RNA模板(通常1-2μL)加入反應(yīng)管,輕彈混勻,短暫離心。注意更換槍頭,避免交叉污染。若檢測RNA,需先經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄酶處理為cDNA,或使用RT-RAA一步法試劑盒。
  第四步:恒溫擴(kuò)增
  將反應(yīng)管放入預(yù)熱至39±1℃的干式恒溫儀或水浴鍋中,蓋緊蓋子防止冷凝水進(jìn)入。擴(kuò)增時間通常為10-20分鐘。部分封閉式設(shè)備可實時監(jiān)測熒光信號,實現(xiàn)定量分析。
  第五步:結(jié)果判讀
  擴(kuò)增結(jié)束后,立即讀取熒光信號:
  熒光法:FAM通道熒光值超過閾值線且呈S型上升曲線為陽性;
  試紙條法:取擴(kuò)增產(chǎn)物滴加側(cè)向流試紙條,出現(xiàn)T線與C線為陽性。陰性對照應(yīng)無信號,陽性對照應(yīng)有效擴(kuò)增,否則實驗無效。
  第六步:廢棄物處理與記錄
  所有耗材(槍頭、離心管)按生物危險廢物處理,高壓滅菌后丟棄。填寫實驗記錄,包括樣本編號、試劑批號、儀器參數(shù)、結(jié)果與操作人員。
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